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流式抗体的选择:从基础知识到实践技巧

发表时间:2024-09-23 访问次数:51

流式细胞术(Flow Cytometry, FC)是一种以流式细胞仪为检测手段,在悬浮液中快速分析和分类单个细胞或细胞结构,并加以定量的技术。结合了光学和电子测量手段,通过对细胞进行荧光染色,实现了对细胞特征,如大小、形状和荧光信号的即时量化。流式细胞术还可以结合细胞分选仪通过荧光激活细胞分选(Fluorescence Activated Cell Sorting, FACS)精准的从群体种分离特定类型的细胞或细胞器,极大地推动了细胞生物学、免疫学以及临床诊断等多个领域的进步。

特点:

  1. 研究对象为生物颗粒 ,如各种细胞、染色体、微生物、人工合成微球等;
  2. 快速、准确、高通量检测;
  3. 多参数、多荧光分析,对细胞特性的识别、计数更为准确;
  4. 定性或定量分析细胞;
  5. 分选特定性状或功能的细胞

流式细胞仪分类:

1. 传统流式细胞仪:

2. 质谱流式细胞仪:

3. 光谱流式细胞仪:

下面先以最常用的传统流式细胞仪进行介绍和了解:

市面上常见的流式细胞仪厂家有:BD、Beckman、Agilent、美天旎等

BD常见仪器:

Beckman常见仪器:

Agilent常见仪器:

美天旎常见仪器:

 

接下来让我们了解一下流式细胞仪的工作原理,仪器一般包括四个系统:

1. 流动室与液流系统

流动室是流式细胞仪的心脏,样品(通常是悬浮在液体中的细胞)被高压泵推入喷嘴形成一股稳定的液流。在流动室内,样品被约束成一条狭窄且均匀的液流束,称为鞘液流(sheath flow),这样可以确保每个细胞逐一经过检测点,避免相互干扰,便于精确测量。

2. 光源与光学系统

光源通常为激光器,产生高强度的单色光束。当液流束通过光源时,细胞或颗粒会被照射并散射光线,或者荧光标记物会发出荧光。光学系统包括透镜、滤光片和反射镜,它们负责收集这些散射光或荧光信号,并将其导向至相应的检测器。通过调整光学元件的位置和角度,可以精确控制信号的方向和强度,从而提高数据的质量和分辨率。

3. 信号收集与光电转换系统

一旦光信号被光学系统捕捉,接下来的任务是由光电倍增管(PMTs)、雪崩光电二极管(APDs)或其他类型的光电探测器接收并将之转换为电信号。这些电信号随后被放大和数字化,以便计算机进行分析。不同的信号代表不同属性的测量结果,如细胞大小、形状或表面/内部标记物的存在。

4. 分选系统

对于具备分选功能的流式细胞仪,在检测过程后,可以根据特定参数(例如荧光强度)自动选择并分离出目标细胞。这是通过施加电荷给选定的液滴实现的,当带有电荷的液滴经过静电偏转板时,就会依据其携带的电荷方向和大小被引导至不同的容器中,实现细胞的精确分选。

实验步骤:

1.  细胞悬液的制备与标记

实验开始的第一步,是从组织切片或培养皿中提取细胞,并将其分散成均匀的单细胞悬浮液。此过程往往涉及到酶消化、机械剪切或温和振荡等多种方法,确保细胞不会聚集,保持良好的流动性。

荧光标记:为了使流式细胞仪能够识别和分析不同类型的细胞或细胞组分,必须使用特异性荧光染料或抗体对细胞进行标记。这一步骤至关重要,因为它直接影响了后续分析的准确性。荧光标记物的选择要基于目标抗原的特异性、细胞类型、以及预期的荧光信号强度。

2.  液流聚焦与激光扫描

液流的生成与稳定化:细胞悬液通过一个精细调节的压力系统,被引导至流式细胞仪的核心部位—微小的喷嘴口。在喷嘴处,由于压力的作用,细胞悬液被拉伸成一条细长的液柱,形成 “液流鞘层”结构。这一过程中,外部的缓冲溶液被施加压力,包围住中央的细胞悬液,使其在中心轴线上形成直线运动,有效防止细胞间的碰撞和聚团。

激光激发与信号捕获:当液流中的细胞依次穿过位于喷嘴下方的激光照射点时,会遇到一束高度集中且频率固定的激光束。激光能量足以激发细胞内携带的荧光标记物质,使之释放出独特的荧光信号。与此同时,细胞自身还会产生两种不同角度的散射光信号,分别反映细胞的物理尺寸和内部结构的复杂程度。这些信号被周围的光电倍增管(PMTs)或雪崩光电二极管(APDs)等敏感传感器捕捉。

3.  数据采集与分析

一旦光电传感器接收到散射光和荧光信号,便迅速将这些模拟信号转化为数字信息,供计算机处理。这个过程涉及对信号强度的量化、噪声滤除和基线校准,确保每条信号曲线的清晰度和准确性。

转化后的数据文件被导入专用的流式细胞仪软件,进行详细的统计分析。软件不仅能够计算细胞的数量、比例、平均荧光强度等基本参数,还具备高级的门控分析、双变量散点图绘制等功能,帮助科研人员从海量数据中挖掘出有价值的信息。通过设定不同的门限值,软件能够自动筛选出符合特定标准的细胞群落,实现细胞亚群的精细化鉴别。

 

4.  细胞分选与回收

除了分析功能之外,部分高端流式细胞仪还配备了细胞分选装置,能够在检测的同时实时分离出目标细胞。这一过程依赖于静电场或声波振动产生的力,精确切割液流中的细胞“液滴”,并将含有特定标记细胞的液滴导向预定的收集容器中。细胞分选的效率和纯度取决于液滴分割的速度和精度,以及分选阈值的合理设置。

 

抗体及荧光素使用原则

流式细胞术依赖于特异性抗体来识别和标记细胞上的特定抗原,进而通过荧光染料的发射光谱来进行细胞表型分析和分选。正确选择抗体和荧光素对于获得高质量的数据至关重要。

1. 确定抗体基本信息

检测目标: 明确是要检测细胞表面还是细胞内的分子。

物种匹配: 选取针对目标物种特异性的抗体。

适用性确认: 确认抗体说明书或数据库中表明其可用于流式细胞术。

2. 熟悉所用仪器参数配置

激光器规格: 了解你的流式细胞仪配备哪些激光器,比如405nm, 488nm, 或者635nm。

滤光片设置: 根据滤光片设定,确定可以同时检测的最大指标数量。

仪器兼容性: 注意不同仪器对相同荧光剂检测通道的潜在差异。

3. 荧光素的选择策略

强度考量: 对于低表达或难区分群体,优先选择亮度高的荧光素如PE或APC;而对于高表达特征,则可以选择FITC这类较弱但普遍的荧光素。

耦合荧光素:是一类组合式的荧光素,通常由两种不同的荧光分子偶联结合而成。耦合荧光素能够提供更加宽广的荧光发射光谱,从而为多色染色增加了更多的选择。

荧光排序参考: PE > APC > PE-cy5 > Cy5 > PerCP-Cy5.5 > FITC。

4. 多色荧光标记技巧

通道分配: 基于仪器能力和检测需求,合理安排荧光素与检测通道的对应关系。

光谱兼容性: 尽量避免使用光谱重叠严重的荧光素组合,以免增加补偿调节难度。

5. 同型对照的重要性

背景排除: 使用与实验抗体同种、同亚型、同荧光标记的对照抗体,以评估非特异性结合带来的背景染色。如实验抗体为APC anti-human CD3 Antibody,种属来源为Mouse IgG2a, κ,那么同型对照应选择APC Mouse IgG2a, κ Isotype Ctrl

一致性保证: 确保对照抗体与实验抗体在种类、荧光标记及用量上一致,以维持数据可靠性。

6. 直接法vs间接法染色决策

直接法优势: 快速简便,减少处理步骤,适合多参数同时分析。

间接法优点: 提供更强信号放大效果,尤其适用于低表达靶点的检测;灵活性更大,利于抗体初筛。

 

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